琼脂糖凝胶电泳中如何根据marker 来进行定量

你给的信息的确很少了.楼上2位都分析的很好,不过,我补充说一下露姬雅关于质粒三条带的解释.现在对于3条带的解释是这样的：最前面跑最快的是超螺旋,质粒是超螺旋的,你电泳的时候最亮很正常；中间的是开环质粒

电泳出现拖尾现象,英文成为smear,就是弥散.其原因,主要从以下两个方面考虑：1、PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差,dNTP浓度过高,Mg2+浓度过高,退火温度过低,循环次数过多,而

1、DNA的分子大小及构型不同构型DNA的移动速度次序为：供价闭环DNA（covalentlyclosedcircular,cccDNA）>直线DNA>开环的双链环状DNA.线状双链DNA分子在一定浓

用来鉴定DNA片段（单位是kDa）的大小的.maker是预制的含有标准片段长度DNA的混合物,在琼脂胶中不同的长度的片段跑的距离不同,通过比较用以初步确定样品中DNA片段的大小.如下图,最左边的是Ma

不一定要取要取5µl,10µl,15µlDNA,你提取的应该是基因组DNA,主要看条带的位置判断你提取的DNA是否完整,从图上看出,与Marker比较,你提取的基因组DN

RNA跟DNA不一样,主要现象就是降解1.提取过程中RNA出现降解2.洗脱的时候洗掉了3.18S有部分降解4.弥散带说明降解严重,杂质过多5.28S部分降解RNA完美提出来的话应该是三条带：28,18

RNA分子有很多二级结构,需经变性剂处理,而DNA一般不需要变性处理RNA电泳的电泳槽及缓冲液均需要确保无RNAase,有RNAase抑制剂处理过；而DNA相应的则需要DNAase抑制剂处理所用的缓冲

首先,点样孔很亮,说明样品有蛋白污染,其次,条带出现笑脸,有拖尾,是电压过高所致,建议减小电压,一般用90V电压跑,您可以试一下,如果还是出现拖尾可以将电泳槽放在冰上跑.至于胶浓度,您可以搜索一下,根

根据你扩增的产物情况选择合适分辨率的凝胶浓度,比如：如果你的条带离引物二聚体很远,且比较单一,那可用1%~1.5%的胶即可,可稍微制厚一点,方便点样；如果你的条带只有一两百即离引物二聚体很紧或者非目标

几个月没问题电泳槽里就不行了,没几天水分会挥发的,而且使用次数多了缓冲能力也会下降,隔几天就换或者往里再添加点新鲜的吧

琼脂糖凝胶浓度与线性DNA分离范围参数：凝胶浓度（%）线性DNA长度（bp）0.51000～300000.7800～120001.0500～100001.2400～70001.5200～30002.0

我硕士专业是分子生物学这方面的,我可以很负责地告诉你,质粒DNA分子具有三种构型：共价闭合环开DNA（cccDNA,SC构型）、开环DNA（OC构型）和线性分子（L构型）.在细菌体内,质粒DNA是以负

琼脂糖凝胶电泳marker是用来做参考的,类似于标尺的作用.marker会跑出很多条带,对应带的片段长度是一定的（不同的marker,不同,可以查询）；通过找到与样品平齐的带,可以间接地判定样品的片段

蛋白污染可以考虑用酚氯仿多抽提几次,记得吸上清的时候小心点,宁可浪费也别吸到界面.一般后续还需要用氯仿/异戊醇抽提来去除酚.这样基本蛋白污染就可以去干净.实在不行,抽提一次后,就用蛋白酶K消化30mi

先回答楼下提取质粒时可能会残留乙醇.乙醇比缓冲液轻,如果样品有乙醇,你点样时乙醇就把样品带出来了.

如果是核酸marker比较简单吧,就是看marker条带的大小和你的目标条带的关系,尽量选择目标条带接近分子量的marker,或是在目标分子量附近条带较多的marker.另外就是,如果目标分子量很小,

如果你的凝胶槽很小可以放进去电泳槽里,当然不取出来啦,免得胶跑歪了.

换一个marker那么大浓度都跑不清楚那只能是marker自己有问题了

提取的时候饱和酚,氯仿需要定量,这些可以去蛋白.去除RNA污染,RNA酶活性,定量.凝胶电泳,试剂最好是即用型的,因为有些东西放久了会长菌.然后是染料的热稳定性和灵敏度.

可能性太多了.1.你跑胶一般都要放MARKER或者叫DNALADDER吧,这个MARKER除外对DNA标记大小以外,还可以用来监控ELECTROPHORESIS的质量,如果MARKER显示而DNA没显